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如何確定 CY2-牛血清白蛋白的最佳標記濃度?

2024-11-20 [97]

1.細胞毒性測試

MTT 法(四唑鹽比色法)

將細胞接種于 96 孔板中,培養(yǎng)至合適密度(例如,對數(shù)生長期細胞)。設(shè)置不同 CY2 - 牛血清白蛋白(CY2 - BSA)濃度梯度的實驗組,同時設(shè)置空白對照組(只含細胞和培養(yǎng)基)和陰性對照組(含未標記的 BSA 和細胞、培養(yǎng)基)。

CY2 - BSA 加入實驗組孔中,繼續(xù)培養(yǎng)一段時間(如 24 - 48 小時)。然后向每孔加入 MTT 溶液,繼續(xù)孵育 3 - 4 小時,使 MTT 被活細胞中的線粒體琥珀酸脫氫酶還原為不溶性的藍紫色甲臜結(jié)晶。棄去上清液,每孔加入 DMSO 溶解甲臜結(jié)晶,用酶標儀在 490nm 波長處測量吸光度。

根據(jù)吸光度計算細胞存活率(細胞存活率 =(實驗組吸光度 - 空白組吸光度)/(陰性對照組吸光度 - 空白組吸光度)×100%)。選擇細胞存活率在一定范圍內(nèi)(如 80% 以上)的 CY2 - BSA 濃度,初步確定為安全濃度范圍。

Live/Dead 細胞染色法

同樣將細胞接種并設(shè)置 CY2 - BSA 濃度梯度實驗組、空白對照組和陰性對照組。將 CY2 - BSA 加入實驗組培養(yǎng)后,用 Live/Dead 細胞染色試劑盒對細胞進行染色。

活細胞被染成綠色,死細胞被染成紅色。通過熒光顯微鏡觀察細胞染色情況,統(tǒng)計活細胞和死細胞的比例。確定使細胞死亡率較低的 CY2 - BSA 濃度范圍。

2.熒光強度測試

體外實驗

準備一系列不同濃度的 CY2 - BSA 溶液,在固定激發(fā)波長(CY2 的激發(fā)波長一般在 488 - 495nm 左右)下,使用熒光光譜儀測量其熒光發(fā)射強度(CY2 的熒光發(fā)射波長在 500 - 520nm 左右)。

繪制熒光強度 - 濃度曲線,隨著 CY2 - BSA 濃度增加,熒光強度通常會增加,但當濃度過高時,可能會出現(xiàn)熒光自猝滅現(xiàn)象,即熒光強度不再隨濃度增加而線性增加,甚至下降。選擇熒光強度增加且未出現(xiàn)明顯自猝滅的濃度范圍,這個范圍通常是比較合適的標記濃度范圍。

體內(nèi)實驗(以小動物成像為例)

將不同濃度的 CY2 - BSA 通過合適的途徑(如靜脈注射、腹腔注射等)注入實驗動物體內(nèi)。在注射后的不同時間點,使用體內(nèi)成像系統(tǒng)在 CY2 的熒光發(fā)射波長范圍內(nèi)進行成像。

觀察不同濃度下熒光信號在體內(nèi)的分布和強度變化。選擇既能產(chǎn)生足夠強的可檢測熒光信號,又不會因濃度過高導(dǎo)致非特異性結(jié)合和背景信號過強的 CY2 - BSA 濃度。

3.標記效率測試

光譜法結(jié)合蛋白定量法

采用不同濃度的 CY2 - BSA 進行標記反應(yīng),反應(yīng)完成后,通過紫外 - 可見分光光度計測量 CY2 的吸收峰(在 488 - 495nm 左右)強度來估算 CY2 的含量,同時使用蛋白定量方法(如考馬斯亮藍法、BCA 法等)確定 BSA 的含量。

根據(jù) CY2 BSA 的含量計算標記效率(標記效率 =(實際標記的 CY2 摩爾數(shù) / 理論上可標記的 CY2 摩爾數(shù))×100%)。選擇標記效率較高的 CY2 - BSA 濃度作為最佳標記濃度。

4.電泳結(jié)合熒光成像法

對不同濃度 CY2 - BSA 標記后的產(chǎn)物進行聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS - PAGE)。由于 CY2 帶有熒光,通過熒光成像系統(tǒng)觀察電泳后的凝膠,比較不同濃度標記產(chǎn)物的條帶熒光強度和位置。

標記效率高的 CY2 - BSA 濃度對應(yīng)的條帶熒光強度相對較高且條帶位置符合預(yù)期(CY2 標記后 BSA 分子量增加),綜合判斷選擇最佳標記濃度。

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